1、分離制備單細(xì)胞懸液：

（1）體外培養(yǎng)的細(xì)胞株：用胰酶消化，最后用PBS懸浮吹打成單細(xì)胞懸液，細(xì)胞要計數(shù)，具體的量我前邊已經(jīng)說過。

（2）體內(nèi)臟器細(xì)胞：處死動物，取出臟器，于Hanks’液中制備成單個細(xì)胞懸液。

2、膠板制備：

（1）取100μl于45℃水浴中保溫的0.5%NMA，鋪于磨沙載玻片上，形成底膠。蓋玻片推勻，不能有氣泡，4度凝固5至8分鐘。

（2）水平取下蓋片，取100μl于37℃水浴中保溫的0.5%LMA與20μl細(xì)胞懸液（約400個細(xì)胞）混勻，立即鋪片，加上蓋玻片，4度凝固5至8分鐘。

3、細(xì)胞裂解與電泳：

（1）將制備好的膠板去掉蓋玻片后，浸于4℃預(yù)冷的細(xì)胞裂解液中，在4℃下裂解2.5到3小時。

（2）取出膠板，用雙蒸水浸沒漂洗后放入電泳槽中，浸泡在4℃預(yù)冷的電泳液中解旋20分鐘。

（3）玻片水平放置陽極端附近，4℃電泳20到25分鐘（25V，300mA）。可在電泳槽周圍加冰塊以保持低溫。

4、中和與染色：

（1）電泳結(jié)束，將膠板浸泡于中和液中，每次10分鐘，共中和3次，每次要更換中和液。最后晾干。

（2）取出膠板，置于染色缸中，在2μg/ml的EB染色液中，暗處染色5到10分鐘。

（3）蒸餾水漂洗2次，每次5分鐘。

稍晾干，濾紙吸去多余水分，盡快在熒光顯微鏡下觀察。

從膠板制備開始到最后都應(yīng)該在暗光下操作。

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