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生物資訊

T細胞治療的“前世今生”

作者:admin 來源:本站 發(fā)布時間: 2018-06-08 15:13  瀏覽次數(shù):
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 在20世紀80年代后期,科家學們開始嘗試用嵌合抗原受體(Chimeric Antigen Receptor, CAR)T細胞進行實驗,當時三名研究人員通過基因工程改造T細胞使其表達識別半抗原的抗體并重定向其特異性1-2。

 2011年,Carl June和他的團隊報道了一例使用自體抗CD19 CAR-T細胞(CAR-T19)成功治愈的一名慢性淋巴細胞白血?。–LL)病患32017年,首款CAR-T療法—諾華制藥“Kymriah”的獲批,堪稱為“免疫療法的里程碑”,成功宣告CAR-T技術在商業(yè)化臨床的使用。迄今為止,已有眾多CAR-T細胞的相關文獻發(fā)表,描述從CAR-T細胞的設計、開發(fā)到臨床應用。在這一期的微信中,我們回顧了最近在CAR-T細胞研究領域里的一系列重要進展,并探討了從實驗室到臨床采用T細胞療法的深遠意義。

設計更好的T細胞


細胞治療的第一步,是需要從患者身上分離T細胞,并進行激活、擴增和遺傳修飾,以表達體外識別所選抗原的CAR。在這個階段,有許多因素需要加以考慮,其中包括靶點選擇和遺傳修飾的方法。

 

  1. 靶點選擇

CARs是合成的跨膜受體,其含有賦予抗原特異性抗體的胞外scFv結構域,和一種細胞內組分,這種細胞內組分通常包括CD3ζ和協(xié)同刺激(比如CD28、4-1BB、OX-40)信號域,以模擬T細胞信號(圖1)4-5。在抗原識別后,CAR-T細胞被激活并啟動它們的效應子功能,比如細胞因子的產(chǎn)生和細胞毒性,其最終導致任何表達靶點抗原細胞的消除。由于腫瘤抗原通常也在非惡性細胞上表達,因此,靶點選擇在CAR-T細胞設計中是一項挑戰(zhàn)。

 

 

 

圖1. 嵌合抗原受體(CAR)的結構

摘選自CAR-T細胞制備的掛圖,通過Nature Protocols制作并由STEMCELL Technologies提供支持。以下研究表明可以通過特異性靶點的選擇,來減少CAR-T細胞療法副作用:

  • Targeting AFP-MHC complex with CAR T cell therapy for liver cancer6

    Clinical Cancer Research, 2017

    利用靶向AFP-MHC復合物的CAR-T細胞治療肝癌。

  • Precision tumor recognition by T cells with combinatorial antigen-sensing circuits7

    Cell, 2016

    使用組合抗原感應環(huán)路使T細胞更精確地識別腫瘤。

  • Systemic immunity is required for effective cancer immunotherapy8

    Cell, 2017

    觸發(fā)廣泛的系統(tǒng)免疫對有效的癌癥免疫療法是必需的。

 2、遺傳修飾

通過對T細胞遺傳修飾表達CAR,其被重新定向至一特定的靶點。目前,最常用的遺傳修飾T細胞的方法是使用病毒(比如γ-逆轉錄病毒或慢病毒)的載體,這些工程化載體可以攜帶CAR構建體9。簡言之,T細胞被激活,然后用可將其攜帶的物質釋放進細胞的病毒顆粒進行轉導,從而導致CAR構建體插入轉導的T細胞基因組里(圖2)。最近,Li等人發(fā)表了關于使用EasySepTM分離的T細胞的γ-逆轉錄病毒的產(chǎn)生和T細胞轉導的完整方案10 

 

    圖2. 通過逆轉錄病毒轉導T細胞

摘選自CAR-T細胞制備的掛圖,通過Nature Protocol制作,并由STEMCELL Technologies提供支持。以下研究闡述了通過對T細胞進行遺傳修飾來定向特定的靶點:

  • Genome-wide profiling reveals remarkable parallels between insertion site selection properties of the MLV retrovirus and the piggyBac transposon in primary human CD4+ T cells11

    Molecular Therapy, 2016

    全基因組分析揭示在人原代CD4+T細胞里MLV逆轉錄病毒插入位點的選擇特性和piggyBac轉座子之間有著顯著的相似性。

  • Evaluation of TCR gene editing achieved by TALENs, CRISPR/Cas9, and megaTAL nucleases12

    Molecular Therapy, 2016

    通過TALENs、CRISPR/Cas9和mega TAL核酸酶實現(xiàn)的TCR基因編輯的評估。

  • In situ programming of leukaemia-specific T cells using synthetic DNA nanocarriers13

    Nature Nanotechnology, 2017

    使用合成的DNA納米載體原位編程白血病特異性T細胞。

3、新概念

實驗室里的前沿研究在CAR-T細胞設計中不斷提出了各種新的、令人興奮的概念。以下研究介紹了一些關于T細胞傳送的新概念:

  • Biopolymer implants enhance the efficacy of adoptive T-cell therapy14

    Nature Biotechnology, 2015

    生物聚合物植入體增強了過繼性T細胞療法的功效。

  • Engineering T cells with customized therapeutic response programs using synthetic Notch receptors15

    Cell, 2016

    使用人工合成的Notch受體制備具有定制治療反應程序的工程化T細胞。

    想了解CAR-T細胞的最新研究進展包括以上文獻的具體內容,請點擊這里

  

參考文獻

1. Gill S et al. (2016) Chimeric antigen receptor T cell therapy: 25 years in the making. Blood Rev 30 (3): 157-67.

2. Gross G et al. (1989) Expression of immunoglobulin-T-cell receptor chimeric molecules as functional receptors with antibody-type specificity. Proc Natl Acad Sci U S A 86 (24): 10024-8.

3. Porter DL et al. (2011) Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med 365: 725-33.

4. Srivastava S et al. (2015) Engineering CAR-T cells: design concepts. Trends Immunol 36(8):494-502.

5. Fesnak AD et al. (2016) Engineered T cells: the promise and challenges of cancer immunotherapy. Nat Rev Cancer 16: 566-81.

6. Liu H et al. (2017) Targeting alpha-fetoprotein(AFP)-MHC complex with CAR T-cell therapy for liver cancer. Clin Cancer Res 23(2): 478-88.

7. Roybal KT et al. (2016). Precision tumor recognition by T cells with combinatorial antigen-sensing circuits. Cell 164(4): 770-9.

8. Spitzer MH et al. (2017). Systemic immunity is required for effective cancer immunotherapy. Cell 168(3): 487-502.

9. Dai H et al. (2016) Chimeric antigen receptors modified T-cells for cancer therapy. J Natl Cancer Inst 108(7).

10. Li G et al. (2017) Gammaretroviral production and T cell transduction to genetically retarget primary T cells against cancer. Methods Mol Biol 1514: 111-118.

11. Gogol-Döring A et al. (2016) Genome-wide profiling reveals remarkable parallels between insertion site selection properties of the MLV retrovirus and the piggyBac transposon in primary human CD4+ T cells. Mol Ther 24(3): 592-606.

12. Osborn MJ et al. (2016) Evaluation of TCR gene editing achieved by TALENs, CRISPR/Cas9, and megaTAL nucleases. Mol Ther 24(3): 570-581.

13. Smith TT et al. (2017) In situ programming of leukaemia-specific T cells using synthetic DNA nanocarriers. Nat Nanotechnol 12(8): 813-20.

14. Stephan SB et al. (2015) Biopolymer implants enhance the efficacy of adoptive T-cell therapy. Nat Biotechnol 33(1): 97-101.

15. Roybal KT et al. (2016) Engineering T cells with customized therapeutic response programs using synthetic Notch receptors. Cell 167(2): 419-32.

 

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