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生物資訊

帶你深入了解 qPCR的實驗原理、檢測步驟和常見問題,助你輕松拿捏qPCR!

作者:admin 來源:本站 發(fā)布時間: 2024-07-23 14:57  瀏覽次數(shù):
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01、什么是qPCR

定量聚合酶鏈式反應(yīng)(qPCR),作為分子生物學(xué)領(lǐng)域的一項革命性技術(shù),憑借其高精確度和準確性,已對生物醫(yī)學(xué)研究產(chǎn)生了深遠的影響。

作為經(jīng)典PCR技術(shù)的的高級形式,qPCR,也被稱為實時熒光定量PCR,利用了新合成DNA鏈中特定染料的熒光信號增強,或是針對特定DNA序列的探針釋放的熒光片段,來監(jiān)測DNA的互補過程。這一技術(shù)的核心優(yōu)勢在于,它能將DNA的檢測與擴增過程相結(jié)合,即時為科研人員提供重要的數(shù)據(jù)信息。

qPCR和傳統(tǒng)PCR的基本操作原理相似,即通過DNA聚合酶催化DNA的補充,將新的標記序列添加到短的單鏈DNA片段上,即引物的3'-OH斷裂。以這一系列反應(yīng)在配備有熒光檢測系統(tǒng)的專用熱循環(huán)儀中進行。通過測量熒光信號強度,將其與預(yù)設(shè)的閾值或標準曲線相比較,從而實現(xiàn)DNA含量相對或絕對定量分析。

02、qPCR應(yīng)用領(lǐng)域

qPCR憑借其實時監(jiān)測、高靈敏度與特異性,能夠?qū)崿F(xiàn)對遺傳物質(zhì)極為精準的測量,并在多個領(lǐng)域中具有不可估量的應(yīng)用價值。

1. 基因表達譜分析:qPCR技術(shù)能夠定量特定基因在不同條件下的表達水平,為揭示基因功能、調(diào)控機制及疾病發(fā)生發(fā)展過程中的基因表達變化提供依據(jù)。

2. 病原體檢測:qPCR能夠快速、準確地檢測出微量的病原體DNA或RNA,為疾病的早期診斷、疫情監(jiān)控及治療效果評估提供支持。

3. 遺傳變異研究:利用qPCR技術(shù),科研人員能夠檢測并分析遺傳序列中的單核苷酸多態(tài)性(SNP)、插入/缺失變異等遺傳變異,為遺傳病篩查、個性化醫(yī)療及藥物研發(fā)等領(lǐng)域的研究提供信息。

 

4. 環(huán)境監(jiān)測:qPCR能夠高效檢測水體、土壤及空氣中微生物群落的變化,評估環(huán)境質(zhì)量,監(jiān)測污染源的生態(tài)影響,為環(huán)境保護和治理提供依據(jù)。

5. 臨床診斷:qPCR已成為多種疾病診斷、預(yù)后評估及治療效果監(jiān)測的重要手段。通過檢測患者體內(nèi)特定基因或病原體的表達水平,醫(yī)生能夠制定更加精準的治療方案。

03、qPCR 的工作原理

qPCR反應(yīng)的核心開始于一個混合體系,該體系包含了DNA聚合酶、脫氧核苷酸三磷酸酯(dNTPs,作為DNA合成的原料)、特定設(shè)計的引物(用于識別并啟動DNA鏈的延伸)、熒光染料或報告探針(用于實時監(jiān)測DNA擴增過程),以及待檢測的模板DNA。

04、qPCR 的關(guān)鍵步驟

變性階段在高溫條件下(常規(guī)設(shè)定為94°C至98°C之間),雙鏈DNA解開成單鏈DNA。

退火階段:在溫度稍低的環(huán)境中(大約50°C至70°C之間),使設(shè)計的引物與模板DNA中的目標區(qū)域相結(jié)合,形成引物-模板DNA復(fù)合物。

延伸階段:DNA聚合酶的催化作用下,溫度調(diào)至酶活性的范圍(通常在68°C至72°C之間),酶沿著引物結(jié)合的起點,以模板DNA為模板,逐個添加核苷酸,產(chǎn)生兩條互補的 DNA 鏈,形成雙鏈DNA。

定量完成階段:在每一輪DNA補充時,通過熒光計測量并記錄這些熒光信號,以做定量分析。

05、qPCR 檢測方法

常見的qPCR檢測方法包括DNA插層染料、水解探針、分子信標和LNA探針。

06、qPCR的引物設(shè)計注意事項

引物的設(shè)計長度推薦在15至30個堿基對之間,這樣有助于70至200個堿基對的目標序列進行高效互補。

為確保PCR反應(yīng)的順利進行,所選用的正向和反向引物應(yīng)具有相近的熔解溫度(Tm),理想范圍設(shè)定在60°C至65°C之間。

引物的3'端應(yīng)充足GC,可以提升引物與模板DNA結(jié)合的效率和提高熔解溫度。引物的GC含量應(yīng)控制在40%至60%之間,以達到最佳的擴增梯度、穩(wěn)定性和擴增效率。

退火溫度通常建議比引物的Tm值低約5°C,這樣做是為了減少非極化的可能性。

07、qPCR常見問題及解決方法

問題1.qPCR 擴增效率低

問題原因:

試劑與反應(yīng)體系因素:如試劑降解、過期或保存不當導(dǎo)致的活性降低。或者加液量不足或成分比例不當而導(dǎo)致效率低。

引物與標記設(shè)計問題:引物和熒光標記(或探針)的設(shè)計存在缺陷。包括引物與模板DNA的結(jié)合力不夠強、引物間形成二聚體、產(chǎn)物長度過長以及未能充分優(yōu)化反應(yīng)條件。

解決方法:

保證所有qPCR試劑質(zhì)量良好,嚴格按照說明書儲存和使用。確保加液量準確無誤,以減少操作誤差。

利用文獻資源或?qū)I(yè)設(shè)計軟件重新設(shè)計引物和標記。以確保產(chǎn)物長度控制在80到150堿基對之間,同時,根據(jù)引物的特性調(diào)整和優(yōu)化PCR反應(yīng)條件。

 

  問題2:結(jié)果出現(xiàn)假陽性現(xiàn)象

問題原因:

試劑與反應(yīng)體系因素:可能試劑或模板受到污染,此外,反應(yīng)體系中鎂離子濃度過高或引物濃度過高等原因?qū)е?/span>,也可能產(chǎn)生假陽性。

設(shè)計問題:引物設(shè)計存在缺陷,不恰當?shù)囊镄蛄锌赡軐?dǎo)致引物間形成二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu),影響PCR后續(xù)的反應(yīng)的進行,最終表現(xiàn)為假陽性結(jié)果。

解決方法:

嚴格遵守實驗室操作規(guī)程,人群小心操作試劑或模板的污染。

一旦發(fā)現(xiàn)污染情況,應(yīng)立即排查并處理,必要時更換受污染的試劑或者模板。

在引物設(shè)計完成后,用專業(yè)的軟件進行驗證,確保避免引物之間的二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的形成。

 

 

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