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本文介紹了血清蛋白質電泳技術的基本原理、實驗的試劑儀器和操作過程以及影響電泳結果的主要因素，還就講述血清蛋白質電泳技術的臨床意義了供廣大讀者參考。
血清蛋白質電泳儀 【 實驗原理】 1. 電泳的基本原理 帶電顆粒在電場中向著與其電性相反方向移動的現象稱為電泳。 電泳時不同的帶電粒子在同一電場中泳動速度不同。帶電顆粒 ( 球形分子 ) 在電場中的電泳速度 (V)  從上式看出，帶電顆粒在電場中的移動速度 (V) 與顆粒帶電荷量 (Q) 以及電場強度 (E) 成正比，與球形分子的大小 ( 半徑為 r ) 及所在介質的粘度 (η) 成反比。因此 , 在同一電場、同一介質中進行電泳時，帶不同電荷，不同大小的顆粒就可以通過電泳而被分離。 在實際操作中，為了不考慮不同電壓對電泳速度的影響，我們常用遷移率( move rate,M )來表示帶電顆粒的電泳特性，遷移率指帶電顆粒在單位電場強度下的電泳速度，即  可見，帶電顆粒的凈電荷越多，分子顆粒越小，在電場中的遷移率就越快;反之越慢。但電泳速度和電泳遷移率是兩個不同的概念，后者有利于不同電場強度下電泳結果的比較，各種帶電顆粒在一定條件下測得的遷移率是一個常數。 2. 影響電泳的主要因素 (1) 電泳介質 pH 值的影響 : 對于蛋白質和氨基酸等兩性分子，電泳介質的 pH 值影響蛋白質的電離情況，即可決定蛋白質的帶電量 (Q) 。 pH 值小于等電點，分子帶正電荷，向負極泳動，如果 pH 大于等電點，分子帶負電荷，向正極泳動。 pH 值偏離等電點越遠，分子所帶凈電荷越多，其泳動速度越快。當緩沖液 pH 等于其等電點時，分子處于等電狀態，不移動。由于血清蛋白質的等電點多在 pH4 ～ 6 之間，因此，分離血清蛋白常用 pH 8.6 的巴比妥緩沖液或三羥甲基氨基甲烷 (Tris) 緩沖液。 (2) 緩沖液的離子強度 : 離子強度低，電泳速度快，分離區帶不易清晰;離子強度高，電泳速度慢，但區帶分離清晰。如離子強度過低，緩沖液的緩沖量小，不易維持 pH 的恒定;離子強度過高，則降低蛋白質的帶電量 ( 壓縮雙電層 ) 使電泳速度減慢。所以常用離子強度為 0.02 ～ 0.2 之間。 (3) 電場強度的影響 : 電場強度和電泳速度成正比關系。電場強度以每厘米的電勢差計算，也稱電勢梯度。如紙電泳的濾紙長 15cm ，兩端電壓 ( 電勢差 ) 為 150V ，則電場強度為 150 / 15=10 V / cm ，電場強度愈高，則帶電粒子的移動愈快。 隨著電場強度的增高，電流強度增加，產熱也增多。產熱的不良后果是： ① 引起水的蒸發，改變溶液 pH 及離子強度; ② 引起介質溫度高，可使蛋白質變性。因此電泳必須控制電壓在一定范圍之內，當進行高壓電泳時，必須裝備有效的冷卻裝置。 (4) 電滲 : 在電場中，由于多孔支持物吸附水中的離子使支持物表面相對帶電，在電場作用下，溶液就向一定方向移動，此種現象稱為電滲。如紙上電泳所用的濾紙纖維素帶有負電荷;瓊脂糖電泳中，所用的瓊脂糖由于大量硫酸根的存在也帶有負電荷，它們使水感應產生水合氫離子 (H+3O) 。在外電場的作用下，水向負極移動。如果被測定樣品也帶正電荷，則移動更快;如果被測定樣品帶負電荷，則移動減慢。所以電泳時，顆粒泳動所表現的速度決定于顆粒本身的泳動速度和溶液的電滲作用。因此在選用支持物時，應盡量避免高電滲作用的物質。 3. 醋 酸纖維素薄膜電泳 醋酸纖維素薄膜電泳是利用醋酸纖維素薄膜做固體支持物的電泳技術。醋酸纖維薄膜具有勻一的泡沫狀結構(厚約 120 μ m )，滲透性強，對分子移動無阻力，用它做區帶電泳的支持物，用樣量少，分離清晰，無吸附作用，應用范圍廣和快速簡便 , 且染色后的薄膜可用乙醇和冰醋酸溶液浸泡透明，透明后的薄膜便于保存和定量分析。 本實驗以醋酸纖維素薄膜作為支持物，于薄膜一端加微量血清，膜兩端連接于緩沖液。血清蛋白質的等電點均低于 pH7.0 ，電泳時常采用 pH8.6 的緩沖液，因此，各種蛋白質皆帶負電荷，在電場中向正極移動，因泳動速度不同而被分離。醋酸纖維素薄膜電泳可把血清蛋白質分離為清蛋白 A 、 α1 、 α2 、 β 和 γ - 球蛋白，將蛋白質染色后，可按染色區帶位置進行定性觀察，也可對各條色帶進行定量測定。 【 器材和試劑】 1. 器材 電泳儀、醋酸纖維素薄膜( 2.5 cm ×8cm )、染色液盤、漂洗盤、鑷子 2. 試劑(1) 巴比妥緩沖液( pH8.6 ，離子強度 0.075 )：巴比妥鈉 15.46g ，巴比妥 2.78g 加蒸餾水數百毫升 , 加熱溶解后再補加蒸餾水至 1000ml, 混勻。 (2) 染色液：氨基黑 10B 0.5g ，溶于甲醇 50ml 中，再加冰醋酸 10ml ，蒸餾水 40ml 混勻。 (3) 漂洗液：甲醇(或 95% 乙醇) 45ml ，冰醋酸 5ml ，蒸餾水 50ml 混勻。 (4) 洗脫液： 0.4mol/L NaOH 溶液 (5) 透明液： 95% 乙醇 75ml ，冰醋酸 25ml 混勻。 【 操作步驟】 1. 點樣 將醋酸纖維薄膜 (2.5cm×8cm) 一條，浸于巴比妥緩沖液，待完全浸透后，取出輕輕夾于濾紙中，吸去多余的溶液，再于薄膜的無光澤面的一端 2.0cm 處，用小玻片蘸取少許血清，垂直印于膜上，待血清滲入薄膜后，以無光澤面向下，兩端用數層浸濕的濾紙 ( 或紗布 ) 貼緊，加蓋，平衡 2 ～ 3min ，然后通電。 2. 通電 一般電壓用 110 ～ 140V ，電流約 0.4 ～ 0.6mA / cm ，時間 45 ～ 60min 。 3. 染色 關閉電源后立即將膜取出，放入染色液中浸染 2 ～ 3min ，然后移入漂洗液中漂洗數次，至蛋白條帶清晰，背景無色為止。 4. 定量 取試管 6 支，編號依次為 0 (空白)、 A 、 α1 、 α2 、 β 、 γ ，將電泳圖譜亦按 A 、 α1 、 α2 、 β 、 γ 蛋白區帶剪開，分別裝入相應號碼試管中。再在圖譜兩端無蛋白部位剪一條寬約 α1 帶的空白帶放入空白管中。各管中加 0.4mol/L NaOH 4ml ，振搖數次，使染料色澤浸出， 30min 后，在 620nm 波長下進行比色，以空白管校正零點，讀取清蛋白及 α1 、 α2 、 β 及 γ 球蛋白各管的吸光度。 【 計算】 吸光度總和 T 為各種蛋白吸光度的總和： T = A + α1 + α2 + β + γ 。 分別 按下面算式計算各組分蛋白質的百分數： 清蛋白 (%) = (A/T)×100% α 1 球蛋白 (%) = ( α 1 /T)×100% α 2 球蛋白 (%) = ( α 2 /T)×100% β 球蛋白 (%) = ( β /T)×100% γ 球蛋白 (%) = (γ/T)×100% 現在許多實驗室采用光密度計定量法。待薄膜完全干燥后，浸于透明液中約 5 ～ 10min ，取出平貼在玻璃板上，完全干燥后成為透明的膜。然后在光密度計上測定吸光密度，并可繪制成曲線，或者直接計算出各種蛋白質的百分含量。 【 臨床意義】 1. 參考值 血清蛋白質參考值
2. 臨床意義 血清蛋白質醋酸纖維薄膜電泳在臨床上常用于分析血、尿等樣品中的蛋白質，供臨床上診斷肝、腎等疾病參考。如腎病綜合癥患者，血漿蛋白中小分子量的白蛋白漏出隨尿液排出體外，導致醋酸纖維素薄膜電泳圖譜中白蛋白區帶明顯變小變淺。又如，慢性肝炎和肝硬化患者，由于肝細胞受損，肝臟合成血漿蛋白質的能力大大下降，使血漿白蛋白顯著降低， γ 球蛋白相對顯著增加。多發性骨髓瘤患者血清蛋白質醋酸纖維素薄膜電泳圖譜中可見不正常的球蛋白條帶。 【注意事項】 1. 電泳時，電壓應控制在 110 ～ 140V ，不能過高，若電壓太高，產熱量大，則蛋白質標本會破壞，并且電壓高則帶電顆粒移動速度快，分離效果不理想。 2. 醋酸纖維素薄膜在電泳前，一定要在緩沖液中浸透，否則有礙電泳分離，最好是浸泡過夜，效果最佳。 3. 點樣時樣品一定要點在無 光澤面，否則很難吸入，點樣量 不宜過多(血清樣品最適宜 3μl )。其原因是醋酸纖維素薄膜承受蛋白質有限。量過多則分子量相近的物質相互爭奪遷移而重疊，影響結果觀察。 4. 電泳開始后，不能再取放薄膜，以防觸電。如必需進行，要先關閉電源。 |
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