【目錄號】RAL48TS，RAL48T
【名稱】
通用名稱：內(nèi)毒素檢測試劑盒（基因重組熒光法）
英文名稱：BioendoTM Recombinant Factor C Endotoxin Test Kit (Fluorescent Assay)
【用途】
用于體外檢測革蘭氏陰性細菌內(nèi)毒素。不可用于疾病診斷。
【檢測原理】
基因重組熒光法采用《中國藥典》2020年版注射劑安全性檢查法應用指 導原則“重組C因子法”檢測細菌內(nèi)毒素。使用基因重組技術，在真核 細胞表達鱟血細胞中與內(nèi)毒素起反應的絲氨酸蛋白酶催化級聯(lián)蛋白。其 中重組C因子與內(nèi)毒素結合之后，由無活性的蛋白酶原轉變成具有生物 活性的蛋白酶，識別并催化下游熒光底物產(chǎn)生熒光信號。熒光信號的強 度和內(nèi)毒素濃度成正相關，通過與標準曲線的比較，計算出樣品中內(nèi)毒 素的濃度。
【儲存條件及有效期】
2-8℃保存，有效期兩年。
【注意事項】
（1） 該試劑盒用于體外細菌內(nèi)毒素的定量檢測，嚴禁用于檢測臨床樣本內(nèi)毒素或作為診斷人類疾病的輔助工具，嚴禁試劑以任何途徑進入機 體。
（2） 接觸試劑及供試品的所有器皿必須是無熱原的，玻璃器皿和材料可以250℃，30分鐘滅菌處理。試驗過程應防止微生物的污染。
（3） 該說明書中的無熱原指內(nèi)毒素濃度小于0.001 EU/ml。
（4）供試品溶液和重組因子試劑混合后溶液的pH值應在6.0~8.0之間， 若超出此范圍，需用無熱原的緩 沖液、0.1N氫氧化鈉或0.1N鹽酸調(diào)節(jié)。
（5）塑料管不建議用于內(nèi)毒素稀釋，稀釋的內(nèi)毒素溶液靜置時間超過 10分鐘，用前在旋渦混合器上劇烈振搖1分鐘，放置4小時以上的內(nèi)毒素 溶液應丟棄。
（6） 重組因子試劑必須用配套的檢測緩沖液溶解；不要用旋渦混合器劇烈振搖；溶解的重組因子試劑應在10分鐘內(nèi)使用；若采用多道移液器， 將溶解的重組因子試劑轉移到無熱原加樣槽，并輕輕搖勻。
（7） 檢測軟件相關參數(shù)可以根據(jù)《質(zhì)檢報告》進行設定，也可以根據(jù)實際情況在范圍內(nèi)進行調(diào)整，以給出標準曲線的相關系數(shù)最佳為宜。
【樣本采集和保存】
樣本采集時必須小心操作以避免微生物或內(nèi)毒素污染。試驗所用的器皿 需經(jīng)處理，以去除可能存在的外源性內(nèi)毒素。耐熱器皿常用干熱滅菌法
（250℃、30分鐘以上）去除，也可采用其他確證不干擾細菌內(nèi)毒素檢查 的適宜方法。若使用塑料器具，如微孔板和與微量加樣器配套的吸頭 等，應選用標明無內(nèi)毒素并且對試驗無干擾的器具。
樣本應儲存于細菌不會繁殖或內(nèi)毒素水平不會改變的條件下。比如，樣 本可以2~8℃臨時存儲（不到24小時），或-10℃以下長期存儲（24小時 以上）。適當?shù)娜萜骱痛鎯l件需用戶自行驗證。
【供試品溶液的制備】
某些樣本需進行復溶、稀釋或在水性溶液中浸提制成供試品溶液。必要 時，可調(diào)節(jié)被測溶液（或其稀釋液）的pH值，一般供試品溶液和重組因 子試劑混合后溶液的pH值在6.0~8.0的范圍內(nèi)為宜，可使用適宜的酸、 堿溶液 或緩沖液調(diào)節(jié)pH值。酸或堿溶液須用細菌內(nèi)毒素檢查用水在已去
除內(nèi)毒素的容器中配制。緩沖液必須經(jīng)過驗證不含內(nèi)毒素和干擾因子。
【內(nèi)毒素限值的確定】
藥品、生物制品的細菌內(nèi)毒素限值（L）一般按以下公式確定：
L= K / M
式中 L為供試品的細菌內(nèi)毒素限值，一般以EU/ml、EU/mg或EU/U（活性單位）表示； K為人每千克體重每小時最大可接受的內(nèi)毒素劑量，以EU/（kg·h）表 示，注射劑K=5 EU/（ kg·h），放射性藥品注射劑K=2.5 EU/（kg·h）， 鞘內(nèi)用注射劑K=0.2EU/（kg·h）； M為人用每千克體重每小時的最大供試品劑量，以ml/（kg·h）、mg/（kg·h）或U/（kg·h）表示，人均體重按60kg計算，人體表面積按 1.62m 計算。注射時間若不足1小時，按1小時計算。供試品每平方米體表面積2 劑量乘以0.027即可轉換為每千克體重劑量（M）。
按人用劑量計算限值時，如遇特殊情況，可根據(jù)生產(chǎn)和臨床用藥實際情況做必要調(diào)整，但需說明理由。
【確定最大有效稀釋倍數(shù)（MVD）】
最大有效稀釋倍數(shù)數(shù)是指在試驗中供試品溶液被允許達到稀釋的最大倍數(shù)（1→MVD），在不超過此稀釋倍數(shù)的濃度下進行內(nèi)毒素限值的檢 測。用以下公式來確定MVD：
MVD = c L /λ
式中 L為供試品的細菌內(nèi)毒素限值；
c為供試品溶液的濃度，當L以EU/mg或EU/U表示時，c的單位需為mg/ml或U/ml，當L以EU/ml表示時，則c等于1.0ml/ml。如需計算在MVD時的供試品濃度，即最小有效稀釋濃度，可使用公式c=λ/L； λ為所使用的標準曲線上最低的內(nèi)毒素濃度。
【用法】
1. 試劑與器材
1.1 試劑
重組因子試劑、檢測緩沖液、細菌內(nèi)毒素工作標準品、細菌內(nèi)毒素檢查用水。
1.2 器材：
無熱原試管、無熱原吸頭、無熱原96孔微孔板（或可拆式板條）； 旋渦混合器、移液器、試管架；
帶溫育系統(tǒng)的熒光微孔板讀數(shù)儀器及配套軟件。
2. 實驗方法 2.1熒光測定儀器的程序及模板設定
以熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN為例： (1)溫度設定：孵育溫度37ºC。 (2)振板設定：中速、振板15秒
(3)讀數(shù)波長設定：當使用熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN時，推薦使用激發(fā)波長355nm/發(fā)射波長460nm。讀取反應開始和30分鐘時的熒光信號儀。
2.2 內(nèi)毒素標準溶液配制
為了計算未知樣品中內(nèi)毒素濃度，每個試驗必須引用一個有效的標準曲線。
用標準內(nèi)毒素配成溶液，制成至少3個濃度的稀釋液（相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不得大于10），最低濃度不得低于所用重組因子試劑的標示檢測限。
（1）取細菌內(nèi)毒素工作標準品1瓶，開啟后加入適量細菌內(nèi)毒素檢查用水，置旋渦混合器上劇烈振搖15分鐘，配制濃度為50EU/ml的內(nèi)毒素標準品溶液。
（2）取無熱原試管4支并標記，細菌內(nèi)毒素檢查用水作稀釋液，將50EU/ml的內(nèi)毒素標準品溶液依次梯度稀釋，配制為5.0EU/ml、0.5EU
/ml、0.05EU/ml和0.005EU/ml等4個濃度。各個濃度內(nèi)毒素標準品稀釋液配制時，均應在旋渦混勻器上混勻至少1分鐘。內(nèi)毒素標準品稀釋液的配制可參考下表：
|
內(nèi)毒素濃度
（EU/ml）
|
稀釋液體積
（ml）
|
加入內(nèi)毒素濃度
（EU/ml）
|
加入內(nèi)毒素體積
（ml）
|
|
5.0
|
0.9
|
50
|
0.1
|
|
0.5
|
0.9
|
5.0
|
0.1
|
|
0.05
|
0.9
|
0.5
|
0.1
|
|
0.005
|
0.9
|
0.05
|
0.1
|
上表提出了一種適用于試劑盒的細菌內(nèi)毒素工作標準品配制系列濃度內(nèi)毒素標準品溶液的方案。并非所有的內(nèi)毒素標準品溶液都必須用于生成標準曲線。可以使用替代稀釋方案，也可以使用其他確定效價的內(nèi)毒 素。用戶可以根據(jù)具體的產(chǎn)品需求選擇標準曲線范圍。數(shù)據(jù)表明，特定范圍標準曲線可以提高測試樣本內(nèi)毒素預測值的準確性。
2.3 重組因子試劑溶解
重組因子試劑是由真核細胞表達的重組因子蛋白和熒光基質(zhì)制備的冷凍干燥品。使用前，每瓶重組因子試劑必須按標示量用配套的檢測緩沖 液。如果使用量超過一瓶，將兩瓶或更多瓶分別復溶，混合后輕輕搖 勻，靜置至溶液澄清后使用。
2.4 實驗操作
（1）預熱熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN，設置檢測溫度為 37℃。
（2）取無熱原黑色微孔板或所需數(shù)量的黑色微孔板條，微孔板條裝至 微孔板架上。相應孔中分別加入細菌內(nèi)毒素檢查用水（作為陰性對 照）、內(nèi)毒素標準品溶液或稀釋液，供試品溶液等各100μl，分別2~3個重復。
（3） 微孔板放入預熱的熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN中， 37℃孵育至少10分鐘。
（4） ） 取出微孔板， 每孔小心加入50μl重組因子試劑（避免產(chǎn)生氣泡!）。
（5） 將微孔板放入熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN中（不要蓋上微孔 板蓋！），點擊檢測軟件界面“確定”按鈕，運行檢測程 序。
（6）檢測程序結束后，進行數(shù)據(jù)處理和數(shù)據(jù)分析。
3. 數(shù)據(jù)處理
（1）設定讀數(shù)之前震蕩15s，隨后靜置孵育3min；讀數(shù)之后，孵育總時長30min；
（2）設定激發(fā)波長355nm，發(fā)射波長460nm。
（3）建立標準曲線
Lg（Y）= A* lgB +a，其中：Y為30min中熒光值減去起始的熒光值，B 為內(nèi)毒素的濃度，A為直線斜 率，a為Y軸截距。
（4）使用軟件可以線性回歸自動計算出結果。
（5） 如果線性相關系數(shù)|r|≥0.980，則可以建立多項式模型制作標準 曲線，計算樣品內(nèi)毒素濃度。
（6）當實驗數(shù)據(jù)同時滿足如下三個條件時實驗才有效：
① 標準曲線的濃度點≥3，線性相關系數(shù)|r|≥0.980；
② 標準曲線最低點的熒光值大于陰性對照的熒光值；
③ 供試品平行管的平均值在標準曲線的區(qū)間內(nèi)。
【供試品的干擾試驗】
1. 以下情況需進行供試品的干擾實驗：
（1）當對新藥或無內(nèi)毒素檢查項的品種建立內(nèi)毒素檢查法時，必須進行干擾試驗；
（2）當試劑、供試品的來源、配方、生產(chǎn)工藝改變，或試驗環(huán)境中發(fā) 生了任何有可能影響試驗結果的變化時，必須重新進行干擾試驗；
（3）當供試品中可能存在對內(nèi)毒素檢測試驗的干擾物質(zhì)時，須進行干擾試驗。
2. 干擾實驗：
（1）選擇標準曲線中點或一個靠近中點的內(nèi)毒素濃度（設為λm），作為供試品干擾試驗中添加的內(nèi)毒素濃度，如采用標準曲線為50，5， 0.5，0.05，0.005EU/ml系列時，可以用供試品配制0.5EU/ml內(nèi)毒素濃 度作為實驗的供試品陽性對照。
（2）用供試品溶液配制濃度為λm的內(nèi)毒素溶液（即含λm內(nèi)毒素的供
試品陽性對照），測量出該溶液的內(nèi)毒素濃度，稱為Cs。
（3）測量出未添加外源內(nèi)毒素的供試品溶液內(nèi)毒素濃度, 稱為C t。
（4）計算該試驗條件下的回收率：R =（Cs –Ct ）/ λm × 100％。
（5）當R在50％～200％之間，則認為在此試驗條件下供試品溶液不存在明顯干擾作用。
（6）當R在50％～200％之外，需對供試品進行系列稀釋或進行其它處 理消除干擾，每一稀釋溶液都重復步驟2~4，直到內(nèi)毒素的回收率在50％～200％之間。選擇回收率最接近100％的稀釋倍數(shù)進行內(nèi)毒素檢 測。
【參考文獻】
1. Bang, F.B. A bacterial disease of Limulus polyphemus. Bull. Johns Hopkins Hosp. 98:325 (1956).
2. Levin, J. and F.B. Bang. The role of endotoxin in the extracellular coagulation of Limulus blood. Bull. Johns Hopkins Hosp. 115:265 (1964).
3. Levin, J. and F.B. Bang. A description of cellular coagulation in the Limulus. Bull Johns Hopkins Hosp. 115:337 (1964).
4. Levin, J. and F.B. Bang. Clottable protein in Limulus: its localization and kinetics of its coagulation by endotoxin. Thromb. Diath. Haemorrh. 19:186 (1968).
5. Solum, N.O. Some characteristics of the clottable protein of Limulus polyphemus blood cells. Thromb. Diath. Haemorrh. 23:170 (1970).
6. Solum, N.O. The coagulogen of Limulus polyphemus hemocytes. A comparison of the clotted and non-clotted forms of the molecule. Thromb. Res. 2:55 (1973).
7. Young, N.S., J. Levin, and R.A. Prendergast. An invertebrate coagulation system activated by endotoxin: Evidence for enzymatic mechanism. J. Clin. Invest. 51:1790 (1972).
8. 2020年版《中華人民共和國藥典》—— 1143細菌內(nèi)毒素檢查法
北京畢特博生物技術有限責任公司
http://www.gducity.com
400熱線：400-833-9299
電話：010-82015225
傳真：010-62015131
聯(lián)系人：張鈺
手機：13366202681
QQ：1050524889
|
